犬髋关节发育不良（Canine Hip Dysplasia，CHD）是最常发生的矫形外科疾病。据动物矫形外科基金会（Orthopedic Foundation for Animal，OFA）2006年统计，不同品种犬CHD发生率在0～73.9%，多见于巨型犬和大型犬。巨型犬（体重≥36.2 kg）和大型犬（体重为18.2～36.2kg）的CHD发病率分别是中小型犬（体重≤18.1 kg）的50倍和20倍[1]。高强度负荷犬，尤其是服役的德国牧羊犬，最易发生本病。
本次试验选取了2005年5月~2006年5月中国农业大学动物医学院检查的71条德国牧羊犬，对其进行X线评价和分析，以求初步了解我国德国牧羊犬CHD的发病情况，并逐步摸索适用于我国的犬髋关节X线检查的方法和评价标准。
一、材料和方法
1.1 实验动物
2005年5月~2006年5月收集中国农业大学动物医学院就诊的71条德国牧羊犬为实验样本，其中69条为大于12月龄成年犬，2条为7～8月龄犬；雄犬14条，雌犬57条。
1.2体格检查
首先对每条犬进行牵遛运动，观察其后肢是否有跛行症状；然后进行触诊检查，分别侧卧和站立保定，活动其髋关节，观察是否有疼痛、关节松弛等症状。
1.3 X线检查
1.3.1投照条件选择
根据犬体形大小以及肥胖程度选择条件，选择投照条件85～95Kv、100cm、100mA、0.08～0.01s，使用10：1滤线栅。
1.3.2 投照体位
采用OFA标准髋关节摄影体位。被检犬两后肢应相互平行，并平行于X线诊断床。两后肢应最大限度向后伸直，并稍内旋，使两髌骨向上位于股骨的内外踝之间，与籽骨在同一水平。此时，两跗关节乃至操作者的持握手指均应平放于X线诊断床上。最后2腰椎，两髂骨翼和膝关节均应在拍摄范围内。因客观原因未进行麻醉或镇静。
1.3.3 X线评价
采用国际CHD委员会（CHD-Commission，Federation Cynologique International）标准进行X线评价[2]，将其分为CHD阴性、CHD可疑、CHD轻度、CHD中度、CHD重度等不同等级。CHD轻度、CHD中度、CHD重度即为发生CHD。
1.4 数据分析
应用统计软件SPSS10.0对测定数据进行卡方检验，P＜0.01为差异极显著，P＜0.05为差异显著。
二、结果
2.1 CHD发病情况
对71条犬统计表明：CHD总体发病率约为67.6%；其中14条雄犬CHD发病率为57.1%，57条雌犬发病率为70.2%，两者差异极显著（P＜0.01）。详见下表
2.2 左、右侧髋关节发病率比较
在48例发病犬中，双侧同时发病的为23例，而单侧发病的为25例，其中左侧18例，右侧7例。具体左、右髋关节发病情况如下表：
表中可知：左后肢CHD发病率为57.7%（41/71），右后肢CHD发病率42.3%（30/71），两者差异极显著（P＜0.01）。
2.3 年龄与髋关节发育不良的关系（如下表）
由表中可知：在小于24月龄的样本中，发病率为77.1%（27/35）；而大于24月龄的样本中，发病率为58.3%（21/36）。
2.4体重与髋关节发育不良的关系
所有数据中，有67例有体重纪录，分析如下：
其中，体重小于30 kg（含30 kg）样本的发病率为67.8%（21/31）；而体重大于30 kg的样本发病率为69.4%（25/36）。
三、讨论
3.1 实验中CHD较高发病率的原因
2006年OFA对89919条德国牧羊犬CHD统计显示发病率为19.5%，而实验所取样本发病率高达为67.6%，两者差异极显著（P＜0.01）。
所取样本较小，并且均来自临床病例，缺乏普查性，可能是造成CHD发病率较高的原因之一。另外，中国大陆范围内德国牧羊犬2005年起才正式进行注册犬的髋关节检测，晚于欧洲各国近40年，长期的不良繁殖也是发病率较高的重要原因。
3.2性别与发病率的关系
根据报道，CHD不具有性别差异，雌雄发病比例相当[3]。而实验中发现母犬的发病率明显高于公犬CHD发病率。形成这种差异主要原因有二：
一、雌激素的影响，人医研究表明80%先天性髋关节脱位的病例为女性，雌激素是造成发病的一方面原因；有人[4]对灵缇幼犬持续注射雌激素，发现成年后CHD发病率升高，但是测定发生CHD的犬的雌激素水平与正常犬无明显差异。雌激素的作用延缓了软骨生长，而加快了骨化中心的出现和生长，使得髋臼变浅，股骨头变小，股骨颈变短，髋关节松弛，从而增加CHD的发生几率。
二、所检查犬均为繁殖用犬，育种学造成了雄性数量较少、雌性动物增加，不符合自然1：1的比例，实验中雄雌比约为1：4，两者数量的差异可能造成两者发病率的不同。
3.3左、右肢发病率的差异
一般认为CHD多双侧发生，两肢发病概率相同[3]。实验中单侧发病占52.1%（25/48），并且左肢发病率（57.7%）明显高于右肢（42.3%），左侧CHD发病程度比右侧严重。
推测可能原因有二：
①样本数量仍较小；
②所检测犬均进行日常牵遛训练，在牵遛过程中多以犬左侧在内侧进行逆时针圆周运动，根据圆周运动受力分析，左侧髋关节的机械压力增大。试验表明[5]，任何致力于髋关节不稳定因素（如内收肌张力太，肌雨强度缺乏，骨盆软组织化学松弛作用，关节损伤和关节负荷体重过度等）都可引起此病的发生。所以上述生物力学的改变可能是造成左右肢发病率、发病程度差异的重要原因。
3.4 动物年龄与CHD的相关性
实验中发现犬CHD的高发年龄为24月龄以内，达到77.1%的发病率。有报道[6]指出在易得该病的犬中，首次发现CHD的年龄往往都在4到12月龄间，然而也有些犬直到24月龄以后才表现出相应的X线征象。因此犬24月龄以内对CHD来说是一个非常重要的阶段。
随着年龄的增加，关节的磨损程度增加，变性性骨关节炎（DJD）逐渐发展，造成高龄犬CHD发病程度有所增加。
3.5 动物体重与CHD的相关性
从数据得知：随着体重的增加，CHD发病率和严重程度有所增加。据报道[7]，60日龄时超过平均体重的幼犬，成年后出现CHD的几率最高。另外，在犬快速生长期间，过量饲喂均能影响CHD和其他骨骼疾病的发生。
随着体重的增加，髋关节负荷增大，关节磨损程度加重，骨关节炎变化越来明显，关节病变程度逐渐增大。
3.6 物理诊断法与X线诊断法的比较
临床检查显示：仅有37.5%的患病犬出现临床跛行症状（18/48），随疾病程度加重，病犬跛行率增加。通过触诊有62.5%患病犬可以发现疼痛或关节松弛的现象（30/48）。
CHD的诊断可以采用物理诊断（如视诊、触诊等），但绝大多数都依靠X线照片。已有报道[8]，在犬2周岁时在麻醉状态下拍摄标准腹背位X线照片进行诊断CHD，准确率达95%。不过，这种方法有许多限制因素。拍摄位置的微小差异往往就可能造成误诊；一周岁时诊断出的CHD只有最终发生CHD的70%。触诊是临床上最常使用的一种方法，通过触诊髋关节有无异常以及动物对触诊的反应来初步诊断出髋关节不全脱位和CHD；随疾病程度加重，体格检查的阳性率增加。但到目前为止，触诊还不具有明确的诊断CHD和揭示其预后的价值。
通过对样本犬CHD发病情况的调查，我们发现X线对犬CHD具有良好的诊断意义；我国德国牧羊犬CHD的发病率较高，导致淘汰率较高，并且左右肢发病具有一定差异，此外性别、年龄、体重均与该病发生有一定相关性。
参考文献
Priester WA,Mulvihill JJ. Canine hip dysplasia : relative risk by sex , size , and breed , and comparative aspects [J] J AM Vet Med Ass, 1972,160:735~739.
熊惠军.犬髋关节发育不良的X线检查技术与诊断 [J]. 动物医学进展，2001，第22卷第4期(总第116期) :104～107.
Lust G. Other orthopedic disease: hip dysplasia in dogs. In: Slatter D. ed. Textbook of Small Animal Surgery. 2nd ed., vol 2. Philadelphia: WB Saunders. 1993: 1938~1944.
Henricson, B., Norberg, I., and Olsson, S.-E. On the Etiology and Pathogenesis of Hip Dysplasia. A Comparative Review. J. Small Anim. Pract. 7: 673-688 (1966).
Johnson LC: Kinetics of osteoarthritis. Lab Invest 8:1223-1241, 1959.
Douglas SW,Williamson HD, Veterinary radiological interpretation [M].1970, 109~111.
Riser WH. Cohen D. Lindqvist S et al: Influence of early rapid groeth and weight gain on hip dysplasia in German shepherd dog: J Am Vet Med Assoc 145: 661, 1964.
William. M. Comparsion of two palpation, four radiographic and three ultrasound methods for early detection of mild to moderate canine hip dysplasia.Veterinary Radiology & Ultrasound(j), Vol. 41, No. 6, 2000, 484-490.
